Vírus associado ao espessamento dos cladódios da pera espinhosa (Opuntia ficus-indica Mill.)

Autores

  • Alba Suaste-Dzul
  • Reyna Isabel Rojas-Martínez
  • Daniel Ochoa-Martínez
  • Emma Zavaleta-Mejía
  • Daisy Pérez-Brito
  • Camilo Hernández-Juárez
  • Douglas Rodríguez-Martínez
  • Alba Suaste Dzul Instituto de Fitossanidad - Fitopatologia do México
  • Reyna Isabel Rojas Martinez Instituto de Fitossanidad - Fitopatologia del México
  • Daniel Ochoa Martínez Instituto de Fitossanidad - Fitopatologia del México
  • Emma Zavaleta Mejía Instituto de Fitosanidad - Fitopatología del México
  • Daisy Pérez Brito Universidad Antónoma de Chapingo
  • Camilo Hernández Juárez Universidad Autónoma de Chapingo
  • Douglas Rodríguez Martínez Colégio de Postgraduandos do Estado do México

DOI:

https://doi.org/10.20873/jbb.uft.cemaf.v2n4.dzul

Palavras-chave:

dsRNA, longas particulas flexíveis, transmissão elétron microscópio

Resumo

Sintomas putativos de fitoplasmas e vírus como amarelecimento, mosaico, proliferação e deformação de frutos e espessamento dos cladódios de pera espinhosa foram observados em Nopaltepec, Estado do México. O objetivo desta investigação foi detectar a presença de vírus em amostras de pera espinhosa mostrando síndrome de espessamento dos cladódios. A análise do RNA de fita dupla no tecido de pera espinhosa com os sintomas mencionados acima revelou a presença de RNA viral. No tecido sintomático, barras flexíveis de 950-1700 nm de comprimento foram observadas com o auxílio da microscopia eletrônica de transmissão. O vírus foi transmitido mecanicamente para Nicotiana tabacum var. Xanthi, N. glutinosa, N. occidentalis, N. benthamiana, Chenopodium quinoa, C. amaranticolor e Datura stramonium. Os resultados da RT-PCR indicam que a partícula não corresponde ao TMV, nem ao membro da família Potyviridae ou a espécies do gênero Potexvirus.

Referências

Abou Haidar, M. G.; Xu H.; Hefferon, K. L. (1998), Plant Virology Protocols. Methods in Molecular Biology, 81, 131-143.

Astier, S.; Albouy, J.; Maury, Y.; Robaglia, C.; Lecoq, H. (2006), Principles of plant virology, genome pathogenicity, virus ecology. First edition. Sciencie Publisher, 472p.

Attothom, S.; Weathers, L. G.; Gumpf, D. J. (1978), Identification and characterization of a potexvirus from California barrel cactus. Phytopathology, 68, 1401-1406.

Barbera, G. (1995), History, economic and agroecological importance. pp.1-11. In: G. Barbera, P. Inglese, E. B. Pimienta, and E. J. Arias (eds.). Agroecology, cultivation and uses of cactus pear. FAO, Roma, Italy, 280p.

Borrego, E. F. and Burgos, N. (1986), El Nopal. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Saltillo, Coahuila, México,7-85.

Brunt, A. A. K.; Cabtree, M. J.; Dallwitz, A. J.; Gibbs, J. W. (1996), Viruses of plant. Description and list from the (VIDE) data base (AL) international. CAB International. Cambridge, Massachussets, USA, 1484p.

Chen, J.; Chen, J.; Adams, M. J. (2001), A universal PCR primer to detect members of the Potyviridae and its use to examine the taxonomic status of several members of the family. Archives of Virology, 146, 757-766.

Colariccio, A.; Eiras, M.; Vicente, M.; Chagas, C. M.; Harakava, R. (1996), Caracterização parcial de umisolado do vírus do mosaico do pepino deMusa sp. "nanicão". Fitopatologia Brasileira, 21, 268-274.

Conti, M.; Gallitelli, D.; Lisa, V.; Lovisolo, O.; Martelli, G. P.; Ragozzino, A.; Rana, G.L.; Vovlas, C. (2001), Principales virus de las plantas hortícolas. Ediciones Mundi Prensa. Barcelona, España, 206p.

Curtis, J. R. (1977), The development of commercial prickly pear farming in the Santa Clara Valley, California. Cactus and Succulent Journal, 47, 35-37.

De La Torre, R.; Salazar Segura, M.; Ruiz, Medrano, R. (2007), Ocurrencia de un Tobamovirus asociado con manchas anulares amarillas en nopal tunero en México. Agrociencia, 41, 763-773.

Dodds, J. A.; Morris, T. J.; Jordan, R. L. (1984), Plant Viral Double-Stranded RNA. Annual Review of Phytopathology, 22, 151-168.

Felker, P.; Bunch, R.; Russo, G.; Tani, J. A. (2009), Progreso en la identificación del agente causal de Engrosamiento del cladodio o macho. In: Producción y aprovechamiento del Nopal, 467p.

Fernández-Herrera, E. (2011), Genes de defensa, actividad enzimática y contenido de capsidiol en chile CM-334 resistente a Phytophthora capsici e infectado por Nacobbus aberrans. PhD Thesis, Colegio de Postgraduados, Montecillo, Edo. de México, México, 84p.

Giri, L. and Chessin, M. (1975), A severe strain of Tobacco mosaic virus from cactus. Phytopathology, 65, 824-825.

Gutiérrez, V. C.; Ruiz, R.; Piedra, E.; De La Torre, R. (2004), Caracterización de una variante del virus mosaico del pepino (CMV) asociada con los síntomas de moteado amarillo de la azucena (Hippeastrum x hybridum Leopoldii) en México. Agrociencia, 38, 343-354.

Hausbeck, M. K. and Gildow, F. E. (1991), First report of Tomato spotted wilt virus on Thanksgiving cactus. Plant Disease, 75, 215.

Himmel, P. T. (2003), Tobacco mosaic virus. Compendium of pepper diseases. APS Press, Page. 38-39.

ICTV (International Committee on Taxonomy of viruses). (2005), Virus Taxonomy. C. M. Fauquet, M. A. Mayo, J. Maniloff, U. Desselberger, L. A. Ball (eds). pp. 821 and 1091. Elsevier Academic Press. San Diego, California, USA, 1259p.

Kraus, J.; Cleveland, S.; Putnam, M. L.; Keller, K. E.; Martin, R. R.; Tzanetakis, I. E. (2010), A new Potyvirus sp. infects verbena exhibiting leaf mottling symptoms. Plant Disease, 94, 1132-1136.

Lastra, J. R.; Gaskin, D.; De Uzcátegui, R. C. (1976), Virus X del Cactus en Venezuela. Agronomía Tropical, 26, 303-310.

Milbrath, M. G. and Nelson, M. R. (1972), Isolation and characterization of a virus from saguaro cactus. Phytopathology, 62, 739-742.

Nerd, A. and Mizrahi, Y. (1993), Modern cultivation of prickly pear in Israel: fertigation. Acta Horticulturae, 349, 235-237.

SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera), (2009), Producción Agrícola, cíclicos perennes de nopal. www.siap.gob.mx. (date accessed: agosto 2011).

Sudzuki, F.; Muñoz, C.; Berger, H. (1993), El Cultivo de la Tuna (Cactus pear). Universidad de Chile, Santiago. Facultad de Ciencias Agrarias y Forestales, 88p.

Valenzuela-Herrera, V.; Redondo-Juárez, E.; Bujanos-Muñiz, R. (2003), Detección de virus por serología y plantas indicadoras en el tubérculo- semilla y plantas de cultivo de meristemos en papa (Solanum tuberosum L.) var. Alfa. Revista Mexicana de Fitopatología, 21, 176-180.

Valverde, R. A.; Dodds, J. A.; Heick, J. A. (1986), Double-stranded ribonucleic acid from plants infected with viruses having elongated particles and undivided genomes. Phytopathology, 76, 459-465.

Van der Vlugt, R. A. A. and Berendsen, M. (2002), Development of a general potexvirus detection method. European Journal of Plant Pathology, 108, 367-371.

Wessels, A. B. (1988), Spineless Prickly Pear. First Perskor Publishers, Johannesburg. Cape Town, South Africa. Luxor publications, 168-169.

Zerbini, F. M. and Zambolim, E. M. (1999), A familia Potyviridae. Revisão Anual de Patologia de Plantas, 7, 1-66.

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Publicado

17-11-2012

Como Citar

Suaste-Dzul, A., Rojas-Martínez, R. I., Ochoa-Martínez, D., Zavaleta-Mejía, E., Pérez-Brito, D., Hernández-Juárez, C., … Martínez, D. R. (2012). Vírus associado ao espessamento dos cladódios da pera espinhosa (Opuntia ficus-indica Mill.). Journal of Biotechnology and Biodiversity, 3(4), 100–107. https://doi.org/10.20873/jbb.uft.cemaf.v2n4.dzul