Alternativas ao paraquat para o controle químico de azevém, aveia e buva

Autores

DOI:

https://doi.org/10.20873/jbb.uft.cemaf.v10n1.albrecht

Palavras-chave:

Lolium perenne ssp. multiflorum, Avena fatua, Conyza sumatrensis, glufosinate, plantas daninhas

Resumo

Com o banimento do paraquat, é necessário planejar o uso de herbicidas alternativos na dessecação de plantas daninhas. Neste sentido desatacam-se herbicidas como glufosinate, saflufenacil, diquat, glyphosate, clethodim, em diferentes associações. Acredita-se que o glufosinate, sobretudo em associações, seja eficaz no controle de Lolium perenne ssp. multiflorum (azevém), Avena fatua (aveia) e/ou Conyza sumatrensis (buva). Objetivou-se avaliar a eficácia de glufosinate isolado, ou em associações, no controle de azevém, aveia e buva, como alternativa ao paraquat. O experimento foi conduzido em área experimental  localizada no município de Cruz Alta, estado do Rio Grande do Sul (RS), Brasil, em novembro de 2020. Foi utilizado delineamento inteiramente casualizado, com quatro repetições. Os tratamentos foram compostos pela aplicação de glufosinate, saflufenacil, diquat, glyphosate e clethodim, isolados ou em associações. Foi avaliado o controle de azevém, aveia e buva, aos 7, 14 e 28 dias após aplicação. O glufosinate em associações foi eficaz no controle das plantas daninhas, sendo quase sempre superior ao observado para diquat isolado ou em misturas. Para se antingir a mesma eficácia das associações, a dose de glufosinate deve ser de no mínimo 700 g i.a. ha-1. A aplicação de glufosinate (400 g i.a. ha-1) em associações com saflufenacil, glyphosate e clethodim foi eficaz no controle de azevém, aveia e buva. A aplicação isolada de glufosinate se mostrou eficaz no controle de todas as plantas daninhas na dose máxima aplicada (700 g i.a. ha-1). O glufosinate, isolado ou em associações, caracteriza-se assim alternativa ao paraquat no controle de plantas daninhas.

Referências

Albrecht AJP, Albrecht LP, Alves SNR, Silva AFM, Silva WO, Lorenzetti JB, Danilussi, MTY, Barroso AAM. Pre-sowing application of combinations of burndown and preemergent herbicides for Conyza spp. control in soybean. Agronomía Colombiana, v.39, n.1, p.121-128, 2021. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v39n1.89545

Albrecht AJP, Albrecht LP, Silva AFM, Ramos RA, Corrêa NB, Carvalho MG, Lorenzetti JB, Danilussi MTY. Control of Conyza spp. with sequential application of glufosinate in soybean pre-sowing. Ciência Rural, v.50, n.9, p.1-9, 2020c. https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20190868

Albrecht AJP, Pereira VGC, Souza CNZ, Zobiole LHS, Al-brecht LP, Adegas FS. Multiple resistance of Conyza suma-trensis to three mechanisms of action of herbicides. Acta Scientiarum. Agronomy, v.42, p.1-9, 2020a. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v42i1.42485

Albrecht AJP, Thomazini G, Albrecht LP, Pires A, Lorenzetti JB, Danilussi MTY, Silva AFM, Adegas FS. Conyza su-matrensis resistant to paraquat, glyphosate and chlorimuron: confirmation and monitoring the first case of multiple re-sistance in Paraguay. Agriculture, v.10, n.12, p.1-11, 2020b. https://doi.org/10.3390/agriculture10120582

Anvisa - Agência Nacional de Vigilância Sanitária. RDC nº 428. Brasília: Diretoria colegiada - Anvisa, 2020.

Bellaloui N, Bruns HA, Abbas HK, Fisher DK, Mengistu A. Effects of harvest-aids on seed nutrition in soybean under midsouth USA conditions. Plants, v.9, n.8, p.1-16, 2020. https://doi.org/10.3390/plants9081007

Camargo ER, Zapiola ML, Avila LA, Garcia MA, Plaza G, Gazziero DLP, Hoyos V. Current situation regarding herbi-cide regulation and public perception in South America. Weed Science, v.68, n.3, p.232-239, 2020. https://doi.org/10.1017/wsc.2020.14

Cantu RM, Albrecht LP, Albrecht AJP, Silva AFM, Danilussi MTY, Lorenzetti JB. Herbicide alternative for Conyza su-matrensis control in pre-planting in no-till soybeans. Ad-vances in Weed Science, v.39, e2021000025, 2021. https://doi.org/10.51694/AdvWeedSci/2021;39:000012

Cesco VJS, Nardi R, Krenchinski FH, Albrecht AJP, Rodri-gues DM, Albrecht LP. Management of resistant Conyza spp. during soybean pre-sowing. Planta Daninha, v.37, p.1-9, 2019. https://doi.org/10.1590/S0100-83582019370100039

Correia NM, Acra LT, Balieiro G. Chemical control of differ-ent Digitaria insularis populations and management of a glyphosate-resistant population. Planta Daninha, v.33, n.1, p.93-101, 2015. https://doi.org/10.1590/S0100-83582015000100011

Costa NV, Neunfeld TH, Ohland T, Piano JT, Klein J. Di-rected-spray application of paraquat and diuron in physic nut plants. Planta Daninha, v.31, n.4, p.987-996, 2013. https://doi.org/10.1590/S0100-83582013000400025

Ferreira DF. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v.35, n.6, p.1039-1042, 2011. https://doi.org/10.1590/S1413-70542011000600001

Gitsopoulos TK, Damalas CA, Georgoulas I. Improving diquat efficacy on grasses by adding adjuvants to the spray solution before use. Planta Daninha, v.32, n.2, p.355-60, 2014. https://doi.org/10.1590/S0100-83582014000200013

Gitsopoulos TK, Damalas CA, Georgoulas I. Optimizing diquat efficacy with the use of adjuvants. Phytoparasitica, v.46, n.5, p.715-722, 2018. https://doi.org/10.1007/s12600-018-0698-y

Heap I. 2021. The international herbicide-resistant weed data-base. Disponível em: http://www.weedscience.org/. Acesso em 17 out 2021.

Kalsing A, Rossi CVS, Lucio FR, Minozzi GB, Goncalves FP, Valeriano R. Efficacy of control of glyphosate-tolerant species of the Rubiaceae family through double-knockdown applications. Planta Daninha, v.38, p.1-9, 2020. https://doi.org/10.1590/S0100-83582020380100023

Kim JW, Kim DS. Paraquat: toxicology and impacts of its ban on human health and agriculture. Weed Science, v.68, n.3, p.208-213, 2020. https://doi.org/10.1017/wsc.2019.70

Pereira LV, Carvalho LB, Dal Magro T. Controle químico de Lolium multiflorum: efeito do biótipo e da época de aplica-ção. Revista de Ciências Agroveterinárias, v.16, n.3, p.338-341, 2017. https://doi.org/10.5965/223811711632017338

Pimentel-Gomes F, Garcia CH. Estatística aplicada a experi-mentos agronômicos e florestais: exposição com exemplos e orientações para uso de aplicativos. Piracicaba: FEALQ, 2002.

Pinho CF, Leal JFL, Souza AS, Oliveira GFPB, Oliveira C, Langaro AC, Machado AFL, Christoffoleti PJ, Zobiole LHS. First evidence of multiple resistance of Sumatran flea-bane (Conyza sumatrensis (Retz.) E.Walker) to five-mode-of-action herbicides. Australian Journal of Crop Science, v.13, n.10, p.1688-1697, 2019. https://doi.org/10.21475/ajcs.19.13.10.p1981

Schneider T, Vargas L, Agostinetto D. Controle alternativo de biótipos de azevém resistentes ao clethodim. Revista Brasi-leira de Herbicidas, v.14, n.3, p.243-247, 2015. https://doi.org/10.7824/rbh.v14i3.424

Scott AJ, Knott M. A cluster-analysis method for grouping means in analysis of variance. Biometrics, v.30, n.3, p.507-512, 1974. https://doi.org/10.2307/2529204

Soltani N, Shropshire C, Sikkema PH. Glyphosate-resistant Canada fleabane control with three-way herbicide tankmixes in soybean. American Journal of Plant Sciences, v.11, n.9, p.1478-1486, 2020. https://doi.org/10.4236/ajps.2020.119107

Tahmasebi BK, Alebrahim MT, Roldán-Gómez RA, Silveira HM, Carvalho LB, Alcántara-de la Cruz R, De Prado R. Ef-fectiveness of alternative herbicides on three Conyza species from Europe with and without glyphosate resistance. Crop Protection, v.112, p.350-355, 2018. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2018.06.021

Takano HK, Beffa R, Preston C, Westra P, Dayan FE. Glufosinate enhances the activity of protoporphyrinogen ox-idase inhibitors. Weed Science, v.68, n.4, p.324-332, 2020. https://doi.org/10.1017/wsc.2020.39

Ulguim AR, Agostinetto D, Vargas L, Silva JDG, Schneider T, Silva BMD. Mixture of glufosinate and atrazine for ryegrass (Lolium multiflorum Lam.) control and its effect on seeds’ quality. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, v.72, n.1, p.8655-8661, 2019. https://doi.org/10.15446/rfnam.v72n1.69093

Velini DE, Osipe R, Gazziero DLP. Procedimentos para insta-lação, avaliação e análise de experimentos com herbicidas. Londrina: SBCPD, 1995.

Vilela XS, Medeiros FCL, Gonçalves AH, Silva LC. Quizalo-fop-p-ethyl controlling sourgrass (Digitaria insularis) and goosegrass (Eleusine indica) in infested coffee areas. Coffee Science, v.14, n.4, p.530-537, 2019. http://dx.doi.org/10.25186/cs.v14i4

Waggoner BS, Mueller TC, Bond JA, Steckel LE. Control of glyphosate-resistant horseweed (Conyza canadensis) with saflufenacil tank mixtures in no-till cotton. Weed Technolo-gy, v.25, n.3, p.310-315, 2011. https://doi.org/10.1614/WT-D-10-00161.1

Zobiole LHS, Krenchinski FH, Pereira GR, Rampazzo PE, Rubin RS, Lucio FR. Management programs to control Co-nyza spp. in pre-soybean sowing applications. Planta Dani-nha, v.36, p.1-8, 2018. https://doi.org/10.1590/S0100-83582018360100076

Zobiole LHS, Pereira VGC, Albrecht AJP, Rubin RS, Adegas FS, Albrecht LP. Paraquat resistance of Sumatran fleabane (Conyza sumatrensis). Planta Daninha, v.37, p.1-8, 2019. https://doi.org/10.1590/S0100-83582019370100018

Journal of Biotechnology and Biodiversity

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Publicado

01-03-2022

Como Citar

Albrecht, A. J. P., Albrecht, L. P., Pasini, M. P. B., Silva, A. F. M., Larini, W. F., & Neuberger, D. C. (2022). Alternativas ao paraquat para o controle químico de azevém, aveia e buva. Journal of Biotechnology and Biodiversity, 10(1), 068–074. https://doi.org/10.20873/jbb.uft.cemaf.v10n1.albrecht